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活性氧檢測試檢測的工作流程步驟

更新時間:2025-09-10點擊次數(shù):43
活性氧檢測試檢測的工作流程步驟
活性氧檢測試檢測流程:從探針加載到信號輸出  
探針加載(細胞預(yù)處理)  
步驟:  
將細胞接種于培養(yǎng)板(如96孔板),待貼壁后更換無血清培養(yǎng)基(避免血清干擾)。  
加入終濃度為5-20μM的探針(如DCFH-DA),37℃孵育20-30分鐘。  
關(guān)鍵點:  
探針濃度需優(yōu)化:過高導致背景噪聲,過低降低靈敏度。  
避光操作:熒光探針易被光淬滅,需用錫箔紙包裹培養(yǎng)板。  
ROS誘導(刺激處理)  
目的:人為提高細胞內(nèi)ROS水平,模擬病理或應(yīng)激狀態(tài)。  
常用刺激物:  
氧化劑:H?O?(100-500μM)、叔丁基過氧化氫(t-BHP)。  
藥物:抗腫瘤藥(阿霉素)、抗生素(慶大霉素)。  
物理刺激:紫外線照射、高濃度葡萄糖(模擬糖尿病環(huán)境)。  
處理時間:根據(jù)刺激物強度調(diào)整(如H?O?處理1-4小時)。  
信號捕獲(熒光檢測)  
方法:  
流式細胞術(shù):單細胞水平分析ROS分布,區(qū)分不同亞群(如活細胞、凋亡細胞)。  
熒光顯微鏡:觀察ROS在細胞內(nèi)的定位(如線粒體、細胞核)。  
多功能酶標儀:批量檢測培養(yǎng)孔中整體熒光強度(適合高通量篩選)。  
數(shù)據(jù)分析:  
熒光強度與ROS水平呈正相關(guān),需扣除空白對照(未加探針的細胞)和陰性對照(未刺激的細胞)。  
質(zhì)量控制與干擾排除  
內(nèi)源性干擾因素  
細胞狀態(tài):死亡細胞釋放內(nèi)容物可能非特異性結(jié)合探針,需通過臺盼藍染色排除死細胞。  
培養(yǎng)基成分:酚紅(培養(yǎng)基pH指示劑)在綠色通道有自發(fā)熒光,需使用無酚紅培養(yǎng)基或選擇紅色熒光探針(如DHE)。  
探針穩(wěn)定性  
光淬滅:熒光探針易被光分解,檢測前需嚴格避光,檢測后立即讀取數(shù)據(jù)。  
氧化自反應(yīng):部分探針(如DCFH)在空氣中可能緩慢氧化,需現(xiàn)用現(xiàn)配或分裝凍存。  
交叉反應(yīng)驗證  
特異性測試:同時使用多種探針(如DCFH-DA+DHE)檢測不同ROS,確認結(jié)果一致性。  
抑制劑驗證:加入ROS清除劑(如NAC、SOD)后,熒光信號應(yīng)顯著下降。  
技術(shù)擴展:非熒光檢測方法  
化學發(fā)光法  
原理:魯米諾(Luminol)與H?O?在辣根過氧化物酶(HRP)催化下發(fā)光,光強與ROS水平相關(guān)。  
優(yōu)勢:無需激發(fā)光,背景噪聲低,適合檢測低濃度ROS。  
比色法  
原理:ABTS(2,2'-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸))被ROS氧化為綠色產(chǎn)物,通過吸光度(650nm)定量。  
應(yīng)用:適用于組織勻漿或體液(如血液、尿液)中ROS的快速檢測。
 

 

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